糖原PAS染色液(细胞专用)说明书

中文名称：糖原PAS染色液(细胞专用)
产品规格：5×20mL|5×50mL
保存：4℃避光，12个月
分类：碳水染色
用途：经典的糖原染色法，不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，特别适用于细胞、极其薄的切片。
注意事项：细胞的糖原染色中推荐采用该染色液，是经典糖原染色法，高碘酸和schiff试剂应低温保存。染色结果为：PAS反应阳性物质(糖原或多糖)均呈红色或紫红色；细胞核呈蓝色。

简介：糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年蕞先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。氧化剂能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于氧化剂还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好氧化剂的浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

糖原PAS染色液(细胞专用)大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h;氧化剂、苏木素浓度更低，geng适用于细胞、超薄组织切片染色；无盐酸乙醇分化步骤。该试剂盒仅适用于科研领域。


操作步骤(仅供参考)：
1、细胞、骨髓涂片用PAS固定液固定10～15min。
2、水洗、晾干。
3、入氧化剂，室温氧化15-20min。
4、自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。
5、入SchiffReagent并加盖，置于室温阴暗处浸染10～20min。
6、亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min。该步骤亦可省略。
7、流水冲洗2min。
8、入Mayer苏木素染色液，复染1～2min。水洗、晾干、镜检。

染色结果：
PAS反应阳性物质(糖原或多糖)    红色或紫红色
细胞核                        蓝色
细胞质                        深浅不一的红色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在氧化剂和SchiffReagent中作用时间的长短。

阴性对照(可选)：
1、取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3)100ml，处理30～60min，与其他样本共同入氧化剂。结果应为阴性。
2、(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他样本共同入氧化剂。结果应为阴性。
3、(备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经氧化剂这一步，直接入SchiffReagent。结果应为阴性。

注意事项：
1、氧化剂氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃蕞佳。
2、过碘酸溶液、SchiffReagent使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前蕞好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。
3、过碘酸溶液和SchiffReagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。
4、如常规切片建议用糖原PAS染色液，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对高。
5、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。